时间:2021-01-05 14:12:00 浏览:1513次
威斯腾生物经过10多年的发展,获得了上百种细胞株和四十余种原代细胞培养经验,并建立了庞大的细胞库及原代培养资料库。细胞平台有资深实验员、规范的SOP操作文件,万级净化细胞房,这些条件为保质保量完成每个客户的实验提供了保障。 同时,威斯腾生物结合多年原代及传代细胞培养经验,结合平台已有的技术优势,建立了完善的体外药筛实验,并引进RTCA(Real-time cellular Analysis,实时无标记细胞记录仪),在药筛过程中,全程实时记录细胞真实状况,为药筛提供最真实精准的实验数据。
无菌操作注意事项
细胞培养一定要保持工作区的无菌清洁,先用紫外灯和臭氧杀菌1h,然后通风30min,操作前需要换细胞间专用拖鞋,双手带上一次性橡胶手套并用75%乙醇消毒,穿上实验服,戴上一次性口罩和帽子,操作时不能大声说话,整个无菌操作都应该在酒精灯的周围进行。
小鼠海马神经元细胞的原代分离培养
1、培养板的包被
用0.01%的 L-多聚赖氨酸溶液包被培养板和小玻片,37℃恒温孵育 4h 或常温过夜。
吸弃 L-多聚赖氨酸溶液,灭菌去离子水漂洗培养孔及小玻片,晾干备用。
2、小鼠海马神经元细胞的分离及培养
(1)75%(体积分数)酒精消毒新生24h内的健康C57小鼠,在无菌条件下脱颈处死,剪开头皮及颅骨,取出脑组织,置于盛冷的pH7.2,无钙、镁的D-Hank's液的平皿中(下置冰袋)。
(2)无菌分离海马组织。保持脑组织背面朝上,在镜下小心翻开大脑皮质,暴露海马,用眼科剪或尖镊分离海马周围组织,取出放入盛有D-Hank's液的平皿中。
(3)用虹膜剪将组织剪切成1mm3左右的组织块,0.125%胰蛋白酶消化,37℃作用 20min,期间振摇 2~3 次。
(4)弃去上清液,加入完全接种液终止消化,漂洗2次。巴斯德吸管轻轻吹打 20次,制成细胞悬液,静置 2min。
(5)悬液收集于新的离心管,离心(1000rpm,10 min,4℃),弃去上清液。加入完全培养液重悬,200 目不锈钢网过滤。
(6)将滤液进行台盼蓝拒染试验,血细胞计数板镜下计数。以 8.0 ×104至 1.0 ×105/mL的密度将细胞以400µL/孔接种到预先用L-多聚赖氨酸包被的24孔培养板或 100µL/孔接种 96 孔培养板。
(7)置 37℃、5%CO2培养箱培养 4-6h,全量更换为无血清培养液。
(8)体外培养第3d,加入Ara-C-工作液,以抑制非神经细胞过度增殖,作用 24 h后吸出。
(9)此后每 3d半量换液1次 , 体外培养第 7~21d的细胞用于实验。
大鼠脊髓神经元细胞的分离及培养
1、培养板的包被
(1)将盖玻片裁成 0.5cm×0.5cm 大小,洗洁精浸洗、烘干。
(2)经 5%盐酸浸泡30min,自来水冲洗20min,三蒸水冲洗,浸泡过夜并烘干;移入 95%酒精浸泡保存。用前酒精灯烤干,放入 24 孔细胞培养板。
(3)用 0.01%的 L-多聚赖氨酸溶液包被培养皿和小玻片,37℃恒温孵育 4h 或常温过夜。
吸弃 L-多聚赖氨酸溶液,灭菌去离子水漂洗培养孔及小玻片,晾干备用。
2、大鼠脊髓神经元细胞的分离及培养
(1) 75%(体积分数)酒精消毒新生 24h 内的健康SD大鼠,在无菌条件下断头,分离并切取脊髓,置于盛冷的pH7.2,无钙、镁的D-Hank's液的平皿中(下置冰袋)。
(2) 无菌条件下仔细剥离脊膜及血管。
(3) 用虹膜剪将组织剪切成 1mm3左右的组织块,0.125%胰蛋白酶消化,37℃作用 10min,期间振摇 2~3 次。
(4)巴斯德吸管轻轻吹打 20次,静置 5min,将细胞上清移入新的无菌离心管,加入完全接种液终止消化。剩余组织按照上述步骤继续消化,重复2-3次,制成细胞悬液。
(5)将新的离心管中细胞悬液,离心(1000r/min,10 min,4℃),弃去上清液。加入完全培养液重悬,200 目不锈钢网过滤。
(6)将滤液进行台盼蓝拒染试验,血细胞计数板镜下计数。以 8.0 ×104至 1.0 ×105/mL的密度将细胞以 400µl/孔接种到预先用L-多聚赖氨酸包被的24 孔培养板
(7)置 37℃、5%CO2培养箱培养 4~6h,全量更换为无血清培养液。
(8)体外培养第 3天,加入Ara-C 工作液,以抑制非神经细胞过度增殖,作用 24 h后吸出。
(9) 此后每 3d半量换液1次 , 体外培养第 7~21天的细胞用于实验。
威斯腾实验服务流程
威斯腾生物服务项目
分子生物学类 | 蛋白质与免疫学 | 动物实验 |
实时荧光定量PCR | 单克隆抗体制备 | 帕金森疾病模型 |
免疫共沉淀(Co-IP) | 多克隆抗体制备 | 抑郁症动物模型 |
ELISA(酶联免疫吸附法)技术 | Western-blot 实验服务 | 脊髓损伤模型 |
生化指标检测 | 蛋白双向电泳实验服务 | 脑外损伤模型 |
双荧光素酶报告基因检测 | 原核蛋白表达纯化 | 骨神经损伤模型 |
染色质免疫共沉淀(ChIP) | 真核蛋白表达纯化 | 心肌缺血模型 |
GST pull Down | ITRAQ定量蛋白质组学 | 心力衰竭模型 |
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SLAC蛋白组学 | 肺动脉高血压动物模型 |
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高血压模型 |
病毒类 | 实验课题整体外包 | 粥样动脉硬化模型 |
过表达/干扰慢病毒包装纯化 | 整体课题外包 | 大脑中动脉阻塞模型 |
过表达/干扰腺病毒包装纯化 | 细胞整体实验外包 | 慢性之气管炎模型 |
逆转录病毒包装纯化 | 动物整体实验外包 | 过敏性哮喘模型 |
腺相关病毒包装纯化 |
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肺炎大鼠模型 |
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肝炎-肝硬化-肝癌模型 |
蛋白芯片 | 原代细胞培养 | 肝纤维化模型 |
细胞因子芯片 | 骨髓间充质干细胞培养 | 胆结石模型 |
生长因子芯片 | 脂肪干细胞培养 | 急性胰腺炎模型 |
信号通路磷酸化水平检测芯片 | 心肌成纤维细胞培养 | 急性肾衰竭模型 |
BioPlex悬浮芯片 | 软骨细胞培养 | 体内血栓模型 |
生长因子芯片 | 血管内皮细胞培养 | 关节炎模型 |
炎症因子芯片 | 神经元细胞培养 | I型和II型糖尿病模型 |
血管生成因子芯片 | 内皮组细胞原代培养 | 裸鼠成瘤 |
凋亡因子芯片 |
|
基因编辑动物 |
趋化因子芯片 | 电生理相关服务 | 动物整体实验服务 |
HuProt TM 20K人类蛋白组芯片 | 膜片钳实验 |
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细胞生物学 | 高通量测序 | 代谢组学 |
细胞原代培养 | mRNA测序 | 气相色谱GC/MS |
MTT检测 | LncRNA测序 | 液相色谱LC/MS |
细胞凋亡检测 | 全基因组测序 | 核磁共震NMR |
细胞周期检测 | RNA-Seq测序 |
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细胞克隆形成实验 | 外显子测序 | 影像学相关实验 |
Transwell细胞迁移/侵袭 | 16s扩增子测序 | Micro-CT |
流式分选 | Small RNA测序 | 小动物活体成像 |
CCK8/XTT检测 | 宏基因组测序 | 核磁共振 |
台盼蓝检测细胞活性 | 单细胞测序 | PET-CT |
药物筛选细胞学实验 | circleRNA测序 |
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细胞粘附性检测 | 甲基化测序 | 基因编辑动物 |
细胞划痕实验 |
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条件性敲除小鼠/大鼠 |
细胞生物学整体实验 |
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全基因敲除小鼠/大鼠 |
细胞成管实验 |
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病理类 | CRISPR/Cas9细胞敲除/敲入 | 基因芯片 |
扫描电镜 | 基因定点突变细胞系 | LncRNA芯片 |
透射电镜 | 单基因敲除细胞系 | miRNA芯片 |
HE染色 | 多基因敲除细胞系 | mRNA芯片 |
免疫组化 | 目的基因敲入细胞系 | 甲基化芯片(限人和小鼠来源样本) |
Tunel(原位末端凋亡法)检测 | 报告基因敲入细胞系 | SNP芯片(限人和小鼠来源样本) |
激光共聚焦 | miRNA/LncRNA敲除细胞系 |
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免疫荧光 |
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Masson染色 | CRISPR/Cas9动物敲除/敲入 |
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原位杂交 | 基因敲除大鼠/小鼠 |
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荧光原位杂交 | 基因敲入大鼠/小鼠 |
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特殊染色(PSA、茜素红、阿尔新蓝等) |
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行为学检测 | 药物筛选服务项目 | 药效学评价 |
水迷宫实验 | 高通量自动药物筛选平台 | 神经系统药物药效学评价 |
旷场实验 | 细胞高内涵药物筛选平台 | 抗肿瘤药物药效学评价 |
重复性刻板行为检测 | 蛋白质组学靶标研发平台 | 心血管系统药物药效学评价 |
动物跑台检测 | 分子药理研究平台 | 泌尿系统药物药效学评价 |
强迫游泳 | 生物膜片钳药物筛选平台 | 内分泌系统药物药效学评价 |
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常规药物体外筛选 | 抗炎免疫药物药效学评价 |
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